Nanofibres de curcumine électrofilées in situ : double action antibactérienne pour stériliser les bactéries résistantes aux médicaments

Résumé

L'infection bactérienne, surtout causée par des bactéries multirésistantes, menace encore la vie humaine. La thérapie photodynamique (PDT) peut tuer efficacement les bactéries, et la PDT basée sur nanofibres peut réduire efficacement les dommages aux tissus normaux. Cependant, les photosensibilisateurs enduits sur les surfaces des fibres se libéreraient dans la plaie, causant certains effets secondaires. Et les nanofibres préparées par méthode traditionnelle présentent une adhérence médiocre sur la plaie, ce qui réduit sévèrement l'effet PDT en raison de son effet à courte portée. Ici, des nanofibres composites curcumine à structure cœur-coquille sont préparées par méthode d'électrofilage in situ via un dispositif d'électrofilage portable auto-fabriqué. Les nanofibres composites obtenues montrent une adhérence supérieure sur différentes surfaces biologiques que celle de la méthode de préparation traditionnelle. Sous irradiation 808 nm, ces nanofibres composites produisent efficacement de l'oxygène singulet (¹O₂) sans détachement de curcumine. Après exposition de ces nanofibres composites aux bactéries résistantes aux médicaments, elles exhibent des comportements antibactériens doubles et tuent efficacement les bactéries résistantes. Ces membranes de nanofibres antibactériennes doubles avec une excellente adhérence peuvent bénéficier à l'application d'infection de plaie comme pansement antibactérien.

Contexte

L'infection bactérienne sans traitement opportun provoquera une septicémie, et la septicémie met ainsi gravement en danger la vie et la santé [1-3]. Bien que les antibiotiques puissent tuer les bactéries, l'utilisation d'antibiotiques à long terme entraînera le développement de bactéries résistantes aux médicaments, telles que le staphylocoque doré résistant à la méticilline (SARM) [4-6]. Le SARM, en tant que type de bactéries multirésistantes, est l'une des bactéries courantes qui causent l'infection de plaie [7]. Dans cette situation, il est nécessaire de trouver des stratégies pour tuer les bactéries en toute sécurité sans développer de résistance. Il a déjà été prouvé que la thérapie photodynamique (PDT) est une méthode efficace de stérilisation [8-11]. Cependant, la plupart des photosensibilisateurs pour la PDT nécessitent une lumière ultraviolette ou une excitation à courte longueur d'onde [12, 13]. Puisque la profondeur de pénétration de la lumière dans l'organisme dépend de la longueur d'onde, la profondeur de pénétration de la lumière ultraviolette et visible est faible, tandis que la profondeur de pénétration de la lumière proche infrarouge (NIR) est relativement profonde. Pire encore, la lumière ultraviolette et à courte longueur d'onde brûleront gravement les tissus humains. Afin d'atteindre des traitements antibactériens sûrs et profonds dans les tissus, le développement de photosensibilisateurs excités par la lumière NIR est une demande et une tendance. Les nanoparticules de conversion ascendante (UCNPs) peuvent convertir la lumière NIR en lumière à courte longueur d'onde [14, 15]. En raison de cette propriété, les photosensibilisateurs peuvent être conçus pour se combiner avec la conversion ascendante pour atteindre l'excitation NIR. Les UCNPs sont utilisés comme station de conversion de longueur d'onde qui convertit la lumière NIR en longueur d'onde courte pour exciter les photosensibilisateurs et produire de l'oxygène singulet (¹O₂) [16-19]. Cependant, les études antérieures portaientmostly sur la préparation de structures nanoparticules avec photosensibilisateurs enduits. Les photosensibilisateurs nus sur la couche la plus externe des nanoparticules sont faciles à détacher [20, 21], et cela a aussi certains effets secondaires sur les tissus biologiques en raison du contact direct, comme l'inhibition de la croissance du collagène tissulaire [22, 23]. En fait, les photosensibilisateurs peuvent atteindre la stérilisation grâce à leur production d'oxygène singulet, ce qui signifie qu'il n'est pas nécessaire que les photosensibilisateurs contactent directement les bactéries ou les tissus biologiques. Par conséquent, nous pouvons concevoir un espaceur pour séparer les photosensibilisateurs des tissus biologiques afin d'éviter les effets secondaires possibles.

L'électrofilage est une méthode rapide et efficace pour préparer des nanofibres, incluant des nanofibres organiques et inorganiques [24-28]. Pendant le processus de préparation des nanofibres, les nanoparticules se combinent facilement avec les fibres pour former des nanofibres composites. Il y a principalement deux méthodes pour former des nanofibres composites. L'une est le dopage de particules à l'intérieur des nanofibres [29], et l'autre est le chargement de particules sur les surfaces des nanofibres [30, 31]. Considérant le but de séparer les photosensibilisateurs des tissus biologiques, l'incorporation des photosensibilisateurs dans les nanofibres est plus préférable comparée aux photosensibilisateurs chargés sur les surfaces des fibres, qui sont faciles à détacher. Cependant, si les nanofibres sont hydrophobes et ne peuvent pas s'infiltrer, l'oxygène singulet est difficile à produire et à livrer aux surfaces des fibres pour atteindre la propriété antibactérienne [32]. Mais les nanofibres hydrophiles se dissolvent facilement lorsqu'elles sont contaminées par le liquide interstitiel. Par conséquent, il est nécessaire de combiner les photosensibilisateurs NIR avec les nanofibres et d'assurer que les nanofibres photodynamiques peuvent tuer efficacement les bactéries, surtout les bactéries résistantes aux médicaments.

Dans cette étude, la curcumine est utilisée comme photosensibilisateur en raison de ses larges sources d'extraits d'organismes. La nanostructure cœur-coquille d'UCNPs est utilisée comme station de transfert de longueur d'onde, et elle montre une haute efficacité de conversion pour produire ¹O₂. Les nanofibres composites UCNPs@Curcumine sont préparées par méthode d'électrofilage in situ via un dispositif d'électrofilage auto-fabriqué. L'adhérence des nanofibres composites obtenues par cette méthode sur différentes surfaces biologiques est meilleure que la méthode de préparation par électrofilage traditionnel. Sous irradiation 808 nm, ces nanofibres composites peuvent efficacement produire ¹O₂ sans détachement de curcumine. Après contamination de ces nanofibres composites avec des bactéries résistantes aux médicaments du SARM, elles produiront des comportements antibactériens doubles qui tuent efficacement les bactéries résistantes.

Méthodes

Matériaux

Chlorure de thulium, chlorure d'ytterbium, chlorure de néodyme et chlorure d'yttrium ont été achetés auprès de Sigma-Aldrich. Méthanol, éthanol, cyclohexane, curcumine, dichlorométhane, acétone, polyvinylpyrrolidone (PVP), polycaprolactone (PCL) et polyéthylèneimine (PEI) ont été achetés auprès de Sinopharm Chemical Reagents. Tous les matériaux ont été utilisés sans purification supplémentaire.

Synthèse des nanoparticules cœur-coquille NaYF₄:Yb/Tm@NaYF₄:Nd@Curcumine

Les nanoparticules de conversion ascendante (UCNPs) de NaYF₄:Yb/Tm@NaYF₄:Nd ont été synthétisées en utilisant des méthodes de co-précipitation [33, 34]. Par la suite, 200 mg d'UCNPs préparés, 90 mg de PEI et 180 mg de curcumine ont été ajoutés et dissous dans le dichlorométhane. Les réactifs ont été agités uniformément pendant 20 h à température ambiante, et les produits obtenus ont été purifiés par centrifugation et lavés deux fois à l'éthanol.

Préparation des nanofibres composites de curcumine via électrofilage in situ

Un gramme de PCL, 0,16 g de PVP et 0,1 g de NaYF₄:Yb/Tm@NaYF₄:Nd@Curcumine ont été ajoutés dans 5 mL d'acétone. Après 12 h d'agitation, une solution précurseur homogène a été obtenue pour l'électrofilage. En prenant 3 mL de la solution précurseur dans une seringue de 5 mL, un équipement d'électrofilage portable auto-fabriqué a été utilisé pour l'électrofilage, qui consiste en une aiguille métallique de 0,4 mm de diamètre, deux piles alcalines, et un convertisseur haute tension qui peut convertir 3 V de la pile en 10 kV pour l'électrofilage. La distance d'électrofilage entre le collecteur et l'aiguille d'électrofilage était d'environ 10 cm.

Détection de la formation de ¹ O ₂

Le vert capteur d'oxygène singulet (SOSG) a été utilisé pour détecter la formation de ¹O₂. Un carré de 9 × 9 mm de membrane de nanofibres nanocomposites préparée avec différentes concentrations d'UCNPs@Curcumine a été ajouté dans une cuve en quartz, puis 3 mL de méthanol contenant 25 μM de SOSG ont été ajoutés. Par la suite, la cuve a été irradiée sous le laser 808 nm avec différents temps d'irradiation. Le spectrophotomètre de fluorescence avec une longueur d'onde d'excitation de 504 nm a été utilisé pour mesurer l'intensité de fluorescence de cette solution, qui reflète le niveau d'oxygène singulet.

Essai antibactérien

Les bactéries résistantes aux médicaments SARM et Escherichia coli ont été utilisées pour évaluer la capacité antibactérienne. Brièvement, les souches bactériennes ont été cultivées dans le milieu de bouillon soja trypsique. Les milieux de culture contenant les souches bactériennes ont été incubés à 37 °C pendant 15 h. Après culture, la concentration de souche bactérienne était de 1 × 10⁶ UFC/mL. Au total, 100 μL de solution bactérienne a été placé dans chaque puits de plaque à 96 puits sur une table ultra-propre stérile. Ensuite, un morceau de membrane de fibres circulaire de 6 mm de diamètre a été ajouté à chaque puits de la plaque à 96 puits. Après 20 min d'irradiation laser 808 nm, la solution bactérienne dans la plaque a été diluée 10 fois avec de l'eau stérile. 10 μL de diluant a été placé dans une plaque d'agar nutritif pour obtenir une plaque d'agar uniformément enduite. La plaque d'agar traitée a été cultivée dans un incubateur bactérien à température constante à 37 °C pendant 18 h et puis photographiée. Dans le groupe témoin, les étapes étaient les mêmes que ci-dessus, sauf que l'irradiation laser 808 nm n'a pas été utilisée. Chaque groupe a été répété avec 5 plaques.

Caractérisation

Les images MET et MEB ont été prises sur les microscopes électroniques JEM-2010 et SU-1510. Le spectre de fluorescence a été mesuré sur le spectrophotomètre de fluorescence Edinburgh FLS1000. Le spectre d'absorption a été enregistré sur le spectromètre Shimadzu UV2550. La spectroscopie infrarouge à transformée de Fourier a été prise sur le spectromètre Nicolet iS50. Le potentiel zêta a été mesuré avec l'analyseur WJL-608. L'hydrophilie avec la méthode de goutte sessile a été testée par l'équipement PT-602Atest.

Résultats et discussion

Caractérisation des nanoparticules et nanofibres composites

La Fig. 1a montre l'image MET des nanoparticules NaYF₄:Yb/Tm@NaYF₄:Nd (UCNPs). Elle démontre une distribution de taille uniforme des UCNPs avec un diamètre moyen d'environ 45 nm. Le potentiel zêta de ces nanoparticules a été testé à + 19 mV (Fichier additionnel 1 : Fig. S1). Après que les UCNPs ont été enrobées de curcumine, la Fig. 1b montre une structure cœur-coquille et l'épaisseur de la coquille de curcumine est d'environ 5 nm. Par la suite, ces nanoparticules cœur-coquille curcumine ont été incorporées dans des fibres PCL/PVP. La Fig. 1c montre l'image MEB de ces nanofibres composites préparées par un dispositif d'électrofilage portable auto-conçu. Le diamètre des nanofibres continues et non fracturées préparées par ce dispositif est d'environ 400 nm, et l'uniformité des fibres est similaire à celle des dispositifs d'électrofilage traditionnels (Fichier additionnel 1 : Fig. S2). Il convient de noter que ce dispositif d'électrofilage portable peut être actionné par deux piles sèches de 1,5 V (Fichier additionnel 1 : Fig. S3), ce qui élimine la limitation de l'utilisation de l'alimentation secteur. Combiné avec ses autres avantages de poids léger (160 g) et de petite taille, il bénéficiera à l'utilisation en extérieur. La Fig. 1d montre l'image MET de ces nanofibres composites, indiquant que les nanoparticules ont une bonne dispersibilité dans les nanofibres.

Images MET de a nanoparticules NaYF₄:Yb/Tm@NaYF₄:Nd (UCNPs) et b nanoparticules UCNPs@Curcumine à structure cœur-coquille. c Image MEB des nanofibres composites de curcumine, d Image MET des nanofibres composites de curcumine.

La raison du revêtement de la coquille NaYF₄:Nd sur le cœur NaYF₄:Yb/Tm était qu'elle peut améliorer la photoluminescence (Fig. 2a). Parce que les spectres de fluorescence des UCNPs chevauchaient bien les spectres d'absorption UV-Vis de la curcumine (Fig. 2b), cela signifie que la photoluminescence plus forte des UCNPs peut transférer plus d'énergie à la curcumine, ce qui était propice à l'excitation des photosensibilisateurs. De plus, considérant que la lumière NIR avec une longueur d'onde de 808 nm pénètre plus profondément dans les tissus vivants que la lumière NIR avec une longueur d'onde de 980 nm, l'introduction de cette coquille NaYF₄:Nd peut moduler la longueur d'onde d'excitation de 980 à 808 nm (Fichier additionnel 1 : Fig. S4), réduisant ainsi les brûlures indésirables sur les tissus normaux. La mesure FTIR a été davantage mesurée. Comme on peut le voir en Fig. 2c, les vibrations d'étirement de C=O à 1628 cm⁻¹, C-O à 1282 cm⁻¹, et C-O-C à 1028 cm⁻¹ se produisent dans les particules nanocomposites (ligne orange), qui proviennent de la curcumine (ligne verte). Pendant ce temps, il y a une vibration d'étirement de C-N à 1125 cm⁻¹, qui vient du PEI (ligne bleue). Leurs diagrammes de structure moléculaire sont illustrés en annexe (Fichier additionnel 1 : Fig. S5). De plus, il y a un faible C=C à environ 1660 cm⁻¹, qui correspond à l'acide oléique en même temps que la synthèse des UCNPs. Cela peut démontrer les composants des nanofibres composites UCNPs@Curcumine.

a Spectre de fluorescence du cœur-coquille NaYF₄:Yb/Tm@NaYF₄:Nd excité par 808 nm, b spectre de fluorescence des UCNPs et spectre d'absorption UV-Vis de la curcumine, c spectres FTIR des UCNPs@Curcumine, curcumine et PEI, d spectres de fluorescence résolus dans le temps des UCNPs et UCNPs@Curcumine.

La Fig. 2d exhibe les courbes d'atténuation de fluorescence des UCNPs avant et après enrobage de curcumine. Elle montre que la durée de vie de fluorescence des UCNPs a diminué de 700 à 390 μs après enrobage avec des coquilles de curcumine. Sur la base de γ = 1 − τ₂/τ₁, où τ₂ et τ₁ sont la durée de vie des UCNPs avant et après l'enveloppe de curcumine, γ est l'efficacité de transfert d'énergie [35]. Ainsi, γ a été calculée à 44,3 %. Une telle haute efficacité de transfert d'énergie a été obtenue, qui d'un premier aspect était due aux bons chevauchements entre les spectres d'absorption de la curcumine et les spectres de photoluminescence des UCNPs (Fig. 2b), de sorte que le transfert d'énergie non radiatif peut se produire entre eux. Le second aspect était que les UCNPs avaient une coquille NaYF₄:Nd qui améliore l'intensité de fluorescence, augmentant ainsi leur intégrale de surface de chevauchement spectral. Le troisième aspect était que la distance entre la curcumine et les UCNPs était l'épaisseur de l'enrobage (< 5 nm), et cette petite distance était propice à la génération de transfert d'énergie par résonance de fluorescence (FRET) hautement efficace. La méthode FRET peut obtenir une efficacité de transfert d'énergie aussi élevée que 44,3 %, ce qui peut également bénéficier à la production efficace subséquente de ¹O₂.

Production de ¹O₂ à partir des nanofibres composites

Afin d'évaluer la capacité des nanofibres nanocomposites à produire ¹O₂, la méthode SOSG a été utilisée. Premièrement, nous avons pris des nanofibres nanocomposites avec une concentration de dopage fixe et observé la génération de ¹O₂ sous différents temps d'irradiation. Comme montré en Fig. 3a, pour une concentration fixe telle que 0,20 % en poids, le temps d'irradiation est l'un des facteurs affectant la génération de ¹O₂. Plus le temps d'irradiation est long, plus ¹O₂ est produit. Cependant, cela montre aussi que bien que la concentration de ¹O₂ augmente progressivement avec l'augmentation du temps d'irradiation, le taux d'augmentation ralentit progressivement et reste presque constant après 20 min, ce qui se manifeste par un intervalle de courbe dense. Ce phénomène peut être dû à la consommation rapide d'oxygène local par la production de ¹O₂ avec des radiations NIR soutenues, résultant en un niveau d'oxygène relativement faible dans la zone locale, et diminuant ainsi le taux d'augmentation de la production de ¹O₂.

Production d'oxygène singulet de la membrane de nanofibres composites dopée avec UCNPs@Curcumine exposée à la lumière 808 nm à différentes a concentrations et b temps d'irradiation.

Pour observer l'influence de la concentration de dopage sur la production de ¹O₂, la Fig. 3b est davantage dépeinte. Comme montré en Fig. 3b, pour un temps d'irradiation fixe tel que 20 min, avec l'augmentation de la concentration de dopage, plus de ¹O₂ a été produit. Cependant, le taux d'augmentation de ¹O₂ a ralenti lorsque la concentration était supérieure à 0,20 % en poids. Ces résultats expérimentaux suggèrent qu'il n'est pas nécessaire d'augmenter indéfiniment le temps d'irradiation et la concentration de dopage pour produire plus de ¹O₂. Le choix optimal est 0,20 % en poids avec 20 min et ainsi dans les expériences suivantes prendront cette concentration et ce temps d'irradiation.

Mouillabilité et adhésivité de la membrane de nanofibres électrofilées in situ

Considérant que la production de ¹O₂ est un processus qui nécessite les nanoparticules UCNPs@Curcumine dans les fibres d'interagir avec l'oxygène dans le fluide corporel, l'angle de contact de cette membrane de fibres a été testé davantage. La Fig. 4a montre une goutte d'eau déposée sur la surface de cette membrane de nanofibres composites et sa mouillabilité après 20 s. Comparée à la membrane de nanofibres de PCL pur (Fig. 4b), la membrane de nanofibres composites a une meilleure mouillabilité. Intéressant, après trempage de la membrane de nanofibres composites dans une solution tampon phosphate (PBS), il n'y avait pas d'UCNPs@Curcumine détecté dans le PBS par spectromètre d'absorption, ce qui signifie qu'aucune curcumine n'a été libérée des fibres. La raison peut être que la curcumine a été enrobée sur les UCNPs, donc la taille des UCNPs@Curcumine (~ 50 nm) était trop grande pour pénétrer la fibre. Comparé aux méthodes de photosensibilisateurs enduits sur les particules ou fibres, augmenter d'abord la taille de la curcumine puis la doper dans les fibres mouillables peut efficacement éviter le détachement des photosensibilisateurs et améliorer la génération et la diffusion de ¹O₂. En plus, considérant que l'effet à courte portée de la PDT et la mauvaise adhérence de la membrane de fibres préparée par la méthode d'électrofilage traditionnel à la surface de la plaie (Fig. 4c ; Fichier additionnel 1 : Fig. S6), l'effet photodynamique serait affecté en raison de l'intervalle entre la membrane de fibres et la surface. Heureusement, ces nanofibres composites de curcumine pouvaient être préparées par méthode d'électrofilage in situ avec une bonne morphologie (Fig. 1c) et exhibaient aussi une bonne adhésivité sur différentes surfaces d'objets (Fig. 4d). Cela signifie que la méthode de dépôt par électrofilage in situ pour préparer la membrane de fibres photodynamiques est plus préférable que la méthode de filage traditionnelle dans laquelle la membrane de fibres est collectée sur la feuille et puis pressée sur la surface de la plaie.

Mesure de l'angle de contact de l'eau de la membrane de nanofibres composites avec matrice de a PCL/PVP et b PCL, c membrane de nanofibres électrofilées traditionnelle et membrane de nanofibres électrofilées in situ, d électrofilage in situ déposé sur différentes surfaces d'objets.

Effet antibactérien double des nanofibres composites de curcumine

Les nanofibres nanocomposites préparées par le dispositif ont été prouvées non toxiques par essai MTT (Fichier additionnel 1 : Fig. S7). De plus, afin de prouver que les fibres ont de bonnes propriétés antibactériennes, la méthode de comptage a été utilisée pour évaluer les propriétés antibactériennes des nanofibres composites. Comme montré en Fig. 5, que la lumière 808 nm soit irradiée ou non sur les fibres pures, il n'y a pas de propriété antibactérienne (Fig. 5a, b). Ces résultats montrent que la lumière 808 nm elle-même n'a pas d'effet bactéricide. Lorsque les fibres sont dopées avec des UCNPs, les bactéries ne diminuent pas, ce qui confirme que les UCNPs n'ont pas d'effet bactéricide (Fig. 5a′, b′). Intéressant, lorsque les fibres sont dopées avec de la curcumine, le nombre de bactéries diminue dans une certaine mesure, ce qui prouve que la curcumine elle-même montre une certaine activité antibactérienne (Fig. 5c, c′). De plus, un résultat bactéricide évident s'est produit dans les fibres dopées avec UCNPs@Curcumine sous irradiation lumière NIR (Fig. 5d′, e′). Combiné avec les résultats de la Fig. 3, ces résultats bactéricides indiquent que le ¹O₂ produit à partir des UCNPs@Curcumine sous irradiation 808 nm pourrait efficacement tuer les bactéries. D'autre part, l'activité antibactérienne de la curcumine était la même en présence et en absence d'irradiation 808 nm, due au fait que l'absorbance de la curcumine était dans la gamme de lumière visible (Fig. 2b), donc la lumière 808 nm n'était pas efficace. C'était aussi la raison pour laquelle la curcumine a été conçue pour enrober la surface des UCNPs. En outre, la Fig. 5d, e montre les fibres dopées avec UCNPs@Curcumine à 0,15 % en poids et 0,20 % en poids, respectivement. Par comparaison, on trouve que le groupe 0,20 % en poids exhibait de meilleures propriétés bactéricides à 20 min d'irradiation lumineuse, et l'effet antibactérien a atteint 95 %. C'est parce que le ¹O₂ produit par le photosensibilisateur curcumine dans l'effet photodynamique peut tuer les bactéries résistantes aux médicaments. Ce résultat est aussi cohérent avec le résultat de ¹O₂ en Fig. 3. Ces données indiquent davantage que les fibres dopées avec UCNPs@Curcumine peuvent tuer le SARM en raison de son activité antibactérienne double, à savoir les fibres dopées avec UCNPs@Curcumine et la PDT, et la PDT a un meilleur effet antibactérien que les fibres dopées avec UCNPs@Curcumine. En plus, nous avons aussi conduit des expériences avec Escherichia coli, qui a aussi confirmé que les nanofibres composites de curcumine électrofilées in situ ont des effets antibactériens doubles sur les bactéries résistantes aux médicaments (Fichier additionnel 1 : Fig. S8). Et l'effet anti-inflammatoire des nanofibres a été vérifié davantage par coloration H&E du SARM (Fichier additionnel 1 : Fig. S9). Après différents traitements de l'infection de plaie, un grand nombre de neutrophiles ont été collectés dans le groupe sans nanofibres nanocomposites, qui étaient des grappes de cellules pourpres et bleues dues à la lésion tissulaire et l'infection suppurée. Cependant, une petite quantité de tissu de granulation et de globules rouges est apparue dans le groupe nanofibres, ce qui reflétait indirectement les propriétés antibactériennes des nanofibres nanocomposites. Cela a un effet bloquant sur l'inflammation de l'infection de plaie.

Performance antibactérienne des nanofibres dopées avec différents échantillons contre le SARM a–e sans et a′–e′ avec exposition lumière 808 nm : a, a′ groupe témoin, b, b′ groupe UCNPs, c, c′ groupe curcumine, d, d′ groupe UCNPs@Curcumine faible dose, et e, e′ groupe forte dose.

Conclusions

En résumé, des nanofibres composites curcumine à structure cœur-coquille sont préparées par méthode d'électrofilage in situ via un dispositif d'électrofilage portable auto-fabriqué. Les nanofibres composites obtenues montrent une adhérence supérieure sur différentes surfaces biologiques que celle de la méthode de préparation traditionnelle. La méthode, augmentant d'abord la taille de la curcumine suivie de son dopage dans la fibre mouillable, peut efficacement éviter le détachement des photosensibilisateurs, améliorant ainsi la production de ¹O₂ et sa diffusion, ce qui peut fournir de l'inspiration pour la conception d'autres nanomatériaux photodynamiques. Après contamination de ces nanofibres composites avec des bactéries résistantes aux médicaments, elles exhibent des comportements antibactériens doubles et tuent efficacement les bactéries résistantes. Ces membranes de nanofibres antibactériennes doubles ont une excellente adhérence et peuvent être utilisées comme pansements antibactériens en combinaison avec l'hémostase, permettant ainsi l'hémostase en extérieur.

Disponibilité des données et matériaux

Les jeux de données générés pendant et/ou analysés pendant l'étude actuelle sont disponibles auprès des auteurs correspondants sur demande raisonnable.